Évaluation de l’effet de l’hormone de synthèse Ovulin sur les performances de reproduction des géniteurs mâles du poisson-chat africain

Étude comparative des performances reproductives des mâles de poisson-chat africain traités et non traités à l’Ovulin

Auteurs

  • Rokyatou SISSAO CNRST / INERA
  • Aboubacar SOURABIE
  • Estèle Pélagie SANOU
  • Abdoul Aziz TAPSOBA
  • Hyacinthe KABORE
  • Konlebinsaongba Jean-Luc POUYA
  • Saïdou SANTI

DOI :

https://doi.org/10.64707/revstsna.v44i2.1967

Mots-clés :

poisson-chat africain, reproduction artificielle, induction hormonale, Ovulin, performances reproductives

Résumé

La reproduction artificielle du poisson-chat africain est essentielle pour optimiser la production d’alevins. Le protocole classique repose sur l’induction hormonale de la maturation des gamètes chez les femelles et les mâles. Toutefois, la stimulation hormonale des mâles est de plus en plus omise, bien que cette pratique puisse altérer la qualité de la laitance, avec des effets variables selon le type d’hormone utilisée. La présente étude avait pour objectif de comparer les  performances  reproductives  de mâles de poisson-chat africain traités ou non à l’hormone de synthèse Ovulin. La méthodologie a consisté à réaliser des reproductions artificielles en utilisant des femelles induites à l’Ovulin à la dose de 0,5 ml/kg, associées soit à des mâles également induits à l’Ovulin à la dose de 0,25 ml/kg, soit à des mâles non traités. Les résultats n’ont révélé aucun effet significatif du traitement hormonal sur le poids des gonades ni sur l’indice gonado-somatique (p > 0,05). En revanche, l’induction hormonale des mâles a entraîné une amélioration significative des performances reproductives (p < 0,05). Des taux de fécondation et d’éclosion de 91,86 % et 77,91

%, respectivement, ont été observés chez les mâles traités à l’hormone, tandis que chez les mâles non traités, ces taux n’étaient que de 55,14 % pour la fécondation et de

21,83 % pour l’éclosion. Ces résultats soulignent l’importance de l’induction de la maturation des gamètes mâles, au même titre que celle des gamètes femelles, afin d’optimiser l’efficacité de la reproduction artificielle du poisson-chat africain.

Références

ATAGUBA, G., KWALA, G., et ABUM, T. (2023). The Effect of

Diluted Doses of GnRHa (Ovulin) Supplemented with Buserelin

Acetate- GnRHa (Suprecur) on Final Ova Maturation and Breeding of the African Catfish (Clarias gariepinus). Aquatic Science and Fish Resources (ASFR), 4(2), 55‑63. https://doi.org/10.21608/asfr.2023.226500.1050 DOI: https://doi.org/10.21608/asfr.2023.226500.1050

AYOOLA, S., KUTON, M., et CHUKWU, S. (2012). Comparative

study of piscine and non-piscine pituitary extract and ovulin for inducing spawning in catfish (Clarias gariepinus). African Journal of Food, Agriculture, Nutrition and Development, 12(54), 6809‑6822. https://doi.org/10.18697/ajfand.54.10850 DOI: https://doi.org/10.18697/ajfand.54.10850

DE GRAAF G. J. et JANSSEN J. A. L. (1996). Artificial reproduction and pond rearing of the African catfish, Clarias gariepinus in subSaharan Africa. A handbook FAO Fisheries TechnicalPaper. N°362. Rome, FAO, 73 p.

DUCARME, C., MICHA, J.-C., 2003. Technique de production intensive du poisson chat africain, Clarias gariepinus. Tropicultura 21, 189–198.

HICKLING, C. F. (1962). Fish Culture. London: Faber and Faber. 295 p.

KENOYE, U. I. O., et GODWIN, A. O. M. (2016). Evaluation of

Efficacy and Cost Effectiveness of Ovulin and Ovaprim Hormones for Spawning of African Catfish (Clarias gariepinus). Journal of isheries Sciences, 10(4), 53‑62.

KIPPER D., TAGUTI T. L., BIALETZKI A., MAKRAKIS M. C.,

BAUMGARTNER G. et SANCHES P. V. 2013. Early ontogeny of Clarias gariepinus (Siluriformes, Clariidae) and aspects of its invasion potential in natural freshwater environments. Acta Scientiarum Biological Sciences, 35 (3) : 411-418. DOI: https://doi.org/10.4025/actascibiolsci.v35i3.12471

MAGAWATA, I., ABUBAKAR, M. Y. et R. J. Muhammad R. J.

(2017). Effects of Varying Doses of Ovulin on Induced Spawning of African Catfish (Clarias gariepinus) Under Semi-Arid Environment in Sokoto, North-Western Nigeria. proceedings of the 32nd annual conference of Fisheries Society of Nigeria (FISON), Nnamdi Azikiwe University, Awka, Anambra State. 23rd-28th , October, 2017. pp 72-76

MOSHA, S. S. (2018). Recent Comparative Studies on the Performance and Survival Rate of African Catfish (Clarias gariepinus) Larval Produced under Natural and Synthetics Hormones : A Review. Journal

of Aquaculture Research et Development, 09(03). https://doi.org/10.4172/2155-9546.1000528 DOI: https://doi.org/10.4172/2155-9546.1000528

MYLONAS, C.C., FOSTIER, A., Zanuy, S. (2010). Broodstock

management and hormonal manipulations of fish reproduction. Gen. Comp. Endocrinol. 165, 516–534.

https://doi.org/10.1016/j.ygcen.2009.03.007 DOI: https://doi.org/10.1016/j.ygcen.2009.03.007

NDIMELE, P. E., et OWODEINDE, F. G. 2012. Comparative

Reproductive and Growth Performance of Clarias gariepinus (Burchell, 1822) and Its Hybrid Induced with Synthetic Hormone and Pituitary Gland of Clarias gariepinus. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 12(3). https://doi.org/10.4194/1303-2712-v12_3_09 DOI: https://doi.org/10.4194/1303-2712-v12_3_09

OGUNTUASE, B. G., et ADEBAYO, O. T. (2014). Sperm Quality and

reproductive performance of male Clarias Gariepinus induced with synthetic hormones (Ovatide and Ovaprim). International Journal of Fisheries and Aquaculture, 6(1), 9‑15. https://doi.org/10.5897/IJFA2013.0364 DOI: https://doi.org/10.5897/IJFA2013.0364

RUKERA TABARO S., MICHA J. C. et DUCARME C. 2005. Essais

d’adaptation de production massive de juvéniles de Clarias gariepinus

en conditions rurales. Tropicultura, 24 (4) : 231-244.

SANTI S. (2017). Analyse de l’effet de la température et du préférendum thermique sur les mécanismes du déterminisme sexuel et de la différenciation gonadique chez le poisson-chat Africain, Clarias gariepinus. PhD en Sciences, Université de Liège, Belgique, 134 p

SANTI, S., GENNOTTE, V., TOGUYENI, A., MELARD, C.,

ANTOINE, N., et ROUGEOT, C. (2016). Thermosensitivity of the sex differentiation process in the African catfish, Clarias gariepinus : Determination of the thermosensitive period. Aquaculture, 455, 73‑80. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2016.01.009 DOI: https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2016.01.009

SANTI, S., SISSAO, R., SOURABIE, A., Ido, C., et TOGUYENI, A.

(2022). Optimisation de la technique de reproduction artificielle du poisson-chat africain Clarias spp via un mode de gestion durable du stock de géniteurs mâles. Science et technique, Sciences Naturelles et Appliquées, 44(1), 171‑189.

SHINKAFI, B. A. et B. D. ILESANMI, B. D. (2014). Effect of varying

doses of ovatide on the breeding performance of African catfish

(Clarias gariepinus Burchell, 1822) in Sokoto, North-Western Nigeria. Asian Journal of Animal Sciences, 8 (2): 56 – 64.

TIOGUE, C. T., AMBELA, D. A. E., NANA, P., et TOMEDI –TABI,

M. E. (2018). Reproductive Performances of African Catfish Clarias

gariepinus according to the Type of Hormones and Substrates in Recycled Water in Southern Cameroon. Asian Journal of Fisheries and Aquatic Research, 1‑10. https://doi.org/10.9734/ajfar/2018/v2i126119 DOI: https://doi.org/10.9734/ajfar/2018/v2i126119

TIOGUE, C. T., NYADJEU, P., MOUOKEU, S. R., TEKOU, G., et

TCHOUPOU, H. (2020). Evaluation of Hybridization in Two African Catfishes (Siluriformes, Clariidae) : Exotic (Clarias gariepinus Burchell, 1822) and Native (Clarias jaensis Boulenger, 1909) Species under Controlled Hatchery Conditions in Cameroon. Advances in Agriculture, 2020, 1‑11. https://doi.org/10.1155/2020/8985424 DOI: https://doi.org/10.1155/2020/8985424

VIVEEN W. J. A. R., RICHTER C. J. J., VAN OORDT P. G. W. J.,

JANSSEN J. A. L. etHUISMAN E. A. (1985). Manuel pratique de pisciculture du poisson-chat africain. Départment de Pisciculture et de Pêche de l’Université Agronomique de Wageningen. 91 p.

ZAMRI, A. S., ZULPERI, Z., ESA, Y., et SYUKRI, F. (2022).

Hormone Application for Artificial Breeding towards Sustainable Aquaculture—A Review. Pertanika Journal of Tropical Agricultural Science, 45(4), 1035‑1051. https://doi.org/10.47836/pjtas.45.4.11 DOI: https://doi.org/10.47836/pjtas.45.4.11

ZANGO, P., TOMEDI, M. T. E., EFOLE, T. E., TIOGUE, C. T., NGUENGA, D., KAMANKE KAMANKE, S. M., MIKOLASEK, O.,

et TCHOUMBOUE, J. (2016). Performances de reproduction du poisson chat endogène du Cameroun Clarias jaensis (Boulenger, 1909) en milieu contrôlé. International Journal of Biological and Chemical Sciences, 10(2), 533. https://doi.org/10.4314/ijbcs.v10i2.7 DOI: https://doi.org/10.4314/ijbcs.v10i2.7

ZOHAR, Y., et MYLONAS, C. C. (2001). Endocrine manipulations of spawning in cultured fish : From hormones to genes. Aquaculture, 197(1‑4), 99‑136. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(01)00584-1 DOI: https://doi.org/10.1016/S0044-8486(01)00584-1

Téléchargements

Publiée

12/31/2025

Comment citer

SISSAO, R., SOURABIE, A., SANOU, E. P., TAPSOBA, A. A., KABORE, H., POUYA, K. J.-L., & SANTI, S. (2025). Évaluation de l’effet de l’hormone de synthèse Ovulin sur les performances de reproduction des géniteurs mâles du poisson-chat africain: Étude comparative des performances reproductives des mâles de poisson-chat africain traités et non traités à l’Ovulin. Sciences Naturelles Et Appliquées, 44(2), 111–126. https://doi.org/10.64707/revstsna.v44i2.1967